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弓形虫抗体试剂检测说明定性

时间:2016-06-15      阅读:244

  弓形虫抗体试剂检测说明定性
  
  本试剂盒仅供研究使用。
  
  96T
  
  使用目的:
  
  本试剂盒用于测定大鼠血清、血浆及相关液体样本中弓形虫抗体IgG(ToxIgG)表达。
  
  实验原理
  
  本试剂盒应用双抗原夹心法测定标本中大鼠弓形虫抗体IgG(ToxIgG)表达。用纯化的抗原包
  
  被微孔板,制成固相抗原,可与样品中弓形虫抗体IgG(ToxIgG)相结合,经洗涤除去未结合
  
  的抗原和其他成分后再与HRP标记的抗原结合,形成抗原-抗体-酶标抗原复合物,经过彻
  
  底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成
  
  zui终的黄色。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),与CUTOFF值相比较,从而
  
  判定标本中大鼠弓形虫抗体IgG(ToxIgG)的存在与否。
  
  试剂盒组成
  
  130倍浓缩洗涤液20ml×1瓶7终止液6ml×1瓶
  
  2酶标试剂6ml×1瓶8阳性对照0.5ml×1瓶
  
  3酶标包被板12孔×8条9阴性对照0.5ml×1瓶
  
  4样品稀释液6ml×1瓶10说明书1份
  
  5显色剂A液6ml×1瓶11封板膜2张
  
  6显色剂B液6ml×1/瓶12密封袋1个
  
  标本要求
  
  1.标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能
  
  马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融
  
  2.不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。
  
  操作步骤
  
  1.编号:将样品对应微孔按序编号,每板应设阴性对照2孔、阳性对照2孔、空白对照1
  
  孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)
  
  2.加样:分别在阴、阳性对照孔中加入阴性对照、阳性对照50µl。然后在待测样品孔先
  
  加样品稀释液40µl,然后再加待测样品10µl。加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不
  
  触及孔壁,轻轻晃动混匀,
  
  3.温育:用封板膜封板后置37℃温育30分钟。
  
  4.配液:将30倍浓缩洗涤液用蒸馏水30倍稀释后备用
  
  5.洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30秒后弃去,如此
  
  重复5次,拍干。
  
  6.加酶:每孔加入酶标试剂50µl,空白孔除外。
  
  7.温育:操作同3。
  
  8.洗涤:操作同5。
  
  9.显色:每孔先加入显色剂A50µl,再加入显色剂B50µl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色
  
  10分钟.
  
  10.终止:每孔加终止液50µl,终止反应(此时蓝色立转黄色)。
  
  11.测定:以空白空调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值)。测定应在加终止
  
  液后15分钟以内进行。
  
  操作程序总结:
  
  计算和结果判定:
  
  试验有效性:阳性对照孔平均值≥1.00;阴性对照平均值≤0.10
  
  临界值(CUTOFF)计算:临界值=阴性对照孔平均值+0.15
  
  阴性判定:样品OD值<临界值(CUTOFF)者为弓形虫抗体IgG(ToxIgG)阴性
  
  阳性判定:样品OD值≥临界值(CUTOFF)者为弓形虫抗体IgG(ToxIgG)阳性
  
  。
  
  注意事项
  
  1.操作严格按照说明书进行,本试剂不同批号组分不得混用。
  
  2.试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未
  
  用完,板条应装入密封袋中保存。
  
  3.浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。
  
  4.封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。
  
  5.底物请避光保存。
  
  6.试验结果判定必须以酶标仪读数为准,使用双波长检测时,参考波长为630nm
  
  7.所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。终止液为2M的硫酸,使用时必须
  
  注意安全。
  
  保存条件及有效期
  
  1.试剂盒保存:;2-8℃。
  
  2.有效期:6个月
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