正常大鼠原代心肌细胞培养
 
一、实验试剂
1、培养基： PriCells Medium + 10% FBS + 1% P/S + PriCells Supplement
2、冻存液： PriCells Medium + 20% FBS + 10% DMSO
3、洗涤液： 1×PBS（pH 7.4）+ 1% P/S
4、染色液： 0.4% Trypan Blue
5、消化液： PriCells Isolation of Primary Cell Kit
6、检测试剂：一抗小鼠抗大鼠α-横纹肌肌动蛋白，二抗FITC标记山羊抗小鼠IgG，乙醇丙酮混合液（1∶1）
 
二、实验器械
1、培养皿
2、培养瓶
3、直剪和眼科剪
4、眼科镊
5、200目网筛
6、玻璃滴管
7、烧杯
8、15ml离心管
 
三、实验流程
取材
↓
取心肌组织放入D-Hanks中洗涤3次
↓
剪碎至1mm3 +消化液（PriCells）
↓
37℃水浴8min，吸弃上层悬液（非心肌细胞）
↓
 余下组织加消化液（PriCells） 37℃磁力搅拌10min，60r/min
↓
上层悬液加消化终止液（PriCells）
↓
余下组织再加消化液（PriCells）继续消化3-5次
↓
收集所有混悬液过200目网筛
↓
收集滤液1000RPM/10min
↓
去上清，收集沉淀，2ml培养基重悬
↓
染色计数
四、实验操作
1、培养瓶预包被。试验前一天预包培养瓶，置于超静台吹干或45℃烘箱烘干（切记保持无菌），4℃冰箱放置，备用。
 
2、取材：出生1—3天幼鼠。
 
3、材料预处理：将获取的心脏放入含有1% P/S的1×PBS（pH 7.4）中，剪去心房，反复洗涤，至心室内无血渍，洗涤液澄清为止。
 
4、消化：将心室肌用眼科剪剪成1mm3 大小组织块，加入消化液10ml，37℃水浴8min后，吸取上层混悬液遗弃；余下组织加入消化液10ml，37℃水浴并用磁力搅拌器搅拌10min；吸取上层混悬液，终止反应；剩余沉淀物再加消化液消化3-5次，直至组织块*消化。
 
5、终止消化：按1∶1加入消化终止液，中止酶反应。
 
6、收集重悬细胞：收集中止后的消化液于离心管中，1000 rpm，离心10 min，弃去上清，加入培养液重悬，染色计数细胞。
 
7、培养细胞密度：调整细胞密度以5 × 105 个/ml 接种入培养瓶。
 
8、培养：放置于37℃，5% CO2 培养箱中。
 
五、细胞鉴定
 
1、显微鉴定：接种后12h细胞形态变为梭形或不规则扁平状，24h后即可看到单个细胞的自发收缩，继而细胞逐渐铺展伸出伪足，形成不规则的星形，到第3～4天，细胞相互接触交织成网，形成细胞单层或细胞簇。
 
2、免疫组织化学鉴定：利用α-横纹肌肌动蛋白抗原检测。
 
3、细胞爬片。将洗净的盖玻片放入6孔培养板中，接种细胞为3×104 个/孔，48小时候细胞可以长满，用镊子取出铺满细胞的盖玻片备用。
 
4、细胞固定：用PBS洗涤细胞，之后放入乙醇丙酮混合液中，固定10min，空气中自然干燥。
 
5、特异性抗体：按照说明书稀释比要求稀释抗体，加入抗体，放置4℃孵育过夜。
 
6、洗涤：1×PBS（pH 7.4）洗涤3次×15分钟，晾干。
 
7、标记性抗体：加入荧光标记抗体，37℃孵育1h。
洗涤：1×PBS（pH 7.4）洗涤3次×15分钟，晾干。
 
8、封片：封片剂封片。
 
9、镜检：荧光显微镜下观察，可见胞浆呈棕黄色染色，表明细胞对α-横纹肌肌动蛋白的表达呈阳性。
 
六、注意事项
 
1、选用出生1-3d的幼鼠。
 
2、在取出心脏之前给实验鼠进行消毒处理。
 
3、采用多次消化，直到组织块*消化，减少消化液对细胞的损伤。
 
4、由于心肌细胞只占总细胞的25%，在接种心肌细胞之前做差速贴壁，除掉大部分成纤维细胞。
 
5、初分离获得的心肌细胞在生理浓度的钙离子溶液中易丧失收缩活性, 为了保持心肌细胞的收缩功能, 在分离的过程中应采用4℃的无钙离子Hanks'缓冲液浸泡和冲洗心肌组织。