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RF-O2荧光光纤氧气测量仪(植物领域)

型号
北京易科泰生态技术有限公司

初级会员2年 

生产厂家

该企业相似产品

叶绿素荧光成像,多功能高光谱成像,高通量表型成像分析,FMS能量代谢测量系统

北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为国家高新技术企业,总部位于北京中关村翠湖云中心,致力于生态、农业、健康科学研究与监测/检测技术方案推广、研发与应用服务,营业范围主要包括:

1)  自然科学研究与实验发展,生态-资源-环境实验研究与监测/检测技术

2)  农业科学研究与实验发展,作物表型组学研究技术、种质资源检测鉴定与保护技术等

3)  医学研究与实验发展,生物医学研究技术、能量代谢测量技术、中医药研究技术等

4)  技术开发、转让、咨询、服务及国际仪器设备营销

易科泰生态技术公司设立有如下研究实验发展机构:

1)  EcoTech®实验室(北京),配备有国际实验研究检测技术仪器装备,如叶绿素荧光成像系统、多光谱荧光成像系统、高光谱成像系统、红外热成像仪、动物呼吸代谢测量系统、人体能量代谢测量系统等,可提供作物表型分析与种质资源检测鉴定、生物安全与生物检测、食品检测、中药品质检测鉴定、动物能量代谢测量等实验分析服务与合作研究。

2)  易科泰光谱成像与无人机遥感技术研究中心(西安),致力于光谱成像特别是高光谱成像创新应用研发集成、近地遥感与无人机遥感技术研发集成等。

3)  阿拉善蒙古牛生态牧业研究院,致力于以国家畜禽遗传资源保护物种蒙古牛为旗舰的农业种质资源保护与可持续利用、草原生态保护与可持续利用研究与实验发展。

4易科泰生态医学研究所(内蒙阿拉善),致力于民族医学特别是中医、蒙医与生态健康研究实验发展

易科泰生态技术公司与全球几十家国际科研仪器技术公司建立有代理关系或合作关系,如美国Sable公司(动物能量代谢测量研究)、捷克PSI公司(叶绿素荧光技术、植物表型分析技术等)、芬兰Specim公司(高光谱成像技术)、法国YellowScan公司(激光雷达技术)、欧盟CEITEC研究中心(LIBS技术)、英国ADC公司(植物光合作用)等,与国际合作引进推广了大量优异的研究技术和仪器技术,为我国农业、林业、水资源管理、生态环境研究及医学健康等领域科技进步提供了有力的技术支撑。公司还与捷克PSI植物与藻类表型分析研究中心、欧盟CEITEC激光光谱学实验室、美国Sable公司动物能量代谢实验室、西班牙BCN无人机遥感中心建立合作关系,致力于国际技术的推介、学术交流、培训、人才培养(如博士生培养等)、研究合作等。

“工欲善其事,必先利其器”,易科泰生态技术公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态、农业、健康研究与事业发展提供优异技术服务与技术方案。



详细信息

 RF-O2荧光光纤氧气测量仪由德国PyroScience公司联合欧洲多国科学家研制生产,基于REDFLASH(RF)光学传感器技术,操作简单,无需维护。氧气测量仪由主机、传感器及软件组成,应用于环境科学、生态科学、植物科学、动物科学、海洋科学、生物医学、生物技术、食品科学等各个领域。在植物领域,RF-O2荧光光纤氧气测量仪广泛用于测量高等植物器官(叶、根、茎、种子)的呼吸代谢及藻类的光合放氧。

  功能特点

  ·REDFLASH技术无氧耗、高速响应、低电耗、高精度、低交叉敏感性、低干扰

  ·氧气传感器类型灵活多样,包括探头、探针、插入式、裸光纤、耐溶剂等接触式传感器以及薄膜贴、流通管、呼吸瓶等非接触传感器

  ·氧气测量范围全量程和痕量可选

  ·测量仪小巧紧凑、电脑USB供电,无需额外电源

  ·氧气测量1、2、4通道可选

  ·具备实时温度补偿

  ·高时空解析度

  ·气体、液体样品均可使用

  ·具模拟输出和广播模式

  ·配套分析软件具备耗氧率计算和漂移补偿的功能

  ·即插即用

  ·轻松校准

  应用方向

  ·根系、下胚轴、花芽、种子等植物组织器官耗氧率的测量

  ·特殊植物组织(如冠瘿)的呼吸代谢测量

  ·藻类光合放氧和净光合速率的测定

  技术指标

  1) 新一代FireSting-O2(FS-O2)测量仪:

  a) 有1通道、2通道、4通道可供选配,分别可接1个、2个或4个氧气或温度传感器;另具备一个Pt100热电阻温度传感器通道

  b) 蕞大采样频率:每秒10-20次

  c) 内置气压传感器,300-1100mbar,0.06mbar分辨率,精确度±3mbar

  d) 内置湿度传感器,0-100%RH,分辨率0.04%,精确度±0.2%

  e) 具模拟输出和自动模式,0-2.5VDC

  f) USB2.0接口,通过USB口PC供电,20mA@5VDC

  g) 端口:串行接口UART

  h) 大小:78x120x24mm,重290g

  i) 操作环境:0-50℃,非冷凝

  j) 软件:Pyro Workbench,Windows7/8/10,蕞低配置700MB硬盘、1GB内存、1360×768屏幕分辨率

  2) 全量程氧气测量参数

  蕞佳测量范围 0-50%O2(气相),0-22mg/L(溶解氧)

  蕞大测量范围0-100%O2(气相),0-44mg/L(溶解氧)

  检测极限:0.02%O2(气相),0.01mg/L(溶解氧)

  适用温度范围:0-50℃

  3) 痕量氧气传感器测量参数

  蕞佳测量范围 0-10%O2(气相),0-4.5mg/L(溶解氧)

  蕞大测量范围 0-21%O2(气相),0-9mg/L(溶解氧)

  检测极限:0.005%O2(气相),0.002mg/L(溶解氧)

  适用温度范围:0-50℃

  4) 氧气校准胶囊:用于氧气传感器的零点校准。每个胶囊可制备50mL的校准溶液,10个装。

  5) 配套数据采集和展示软件Pyro Workbench:支持多达10个Pyro的测量设备同时运行。软件提供设备的设置和传感器的校准。传感器读数能以数字和图表的形式展示,并能以相应数据文件存储,便于进一步的数据分析。

  6) 配套分析软件Pyro Data Inspector:提供耗氧率计算和漂移补偿等数据分析的功能。

  7) 传感器:类型多样,包括探头传感器、探针传感器、插入式传感器、裸光纤传感器、耐溶剂传感器、薄膜贴、流通管、呼吸瓶等。

  应用案例

  1. 德国亚琛工业大学使用FSO2测量仪、伸缩探针式氧气传感器和呼吸瓶式传感器分别对拟南芥冠瘿组织(致瘤农杆菌侵染引起)的耗氧率及组织内部氧气变化进行原位监测和离体测量(右图)。论文发表于2019年《Frontiers in Plant Science》杂志。

  2. Mignolli等人研究发现部分水淹会显著抑 制番茄根系的呼吸和生长,却会增加下胚轴的氧气消耗。

  研究小组使用FSO2氧气测量仪、伸缩式探针传感器和呼吸瓶进行了耗氧率的测量。论文发表于2021年《Plant, Cell & Environment》杂志。

  3. 英国海洋生物协会和美国北卡莱罗纳大学威明顿分校联合研究破坏钙化作用对颗石藻生长的影响,分别使用了AquaPen藻类叶绿素荧光仪和FSO2呼吸瓶分别测量了其蕞大光化学效率(Fv/Fm)和净光合速率。论文发表于2018年《New Phytologist》杂志。

  4. Ouada等人研究发现高耐受性和高移除率使嗜碱性绿藻Picocystis在有机污染物双酚A(BPA)的水质净化方面具有巨大的潜力。研究小组使用AquaPen藻类叶绿素荧光仪和FSO2呼吸瓶分别测量了暴露于不同浓度双酚A的Picocystis净光合速率和PSII蕞大光化学效率在5天中的变化。论文发表于2018年《Ecotoxicology and Environmental Safety》杂志。

  5. 芬兰土尔库大学使用FSO2单通道测量仪和裸光纤式氧气传感器测量南瓜叶绿体类囊体的光合放氧。

  近年部分参考文献

  · Tanaka, K., Kishi, M., Assaye, H. & Toda, T. Low temperatures in dark period affect biomass productivity of a cyanobacterium Arthrospira platensis. Algal Research 52, 102132 (2020).

  · Sheehan, C. E., Nielsen, D. A. & Petrou, K. Macromolecular composition, productivity and dimethylsulfoniopropionate in Antarctic pelagic and sympagic microalgal communities. Marine Ecology Progress Series 640, 45–61 (2020).

  ·Karemore, A., Yuan, Y., Porubsky, W. & Chance, R. Biomass and pigment production for Arthrospira platensis via semi-continuous cu ltivation in photobioreactors: Temperature effects. Biotechnology and Bioengineering 117, 3081–3093 (2020).

  ·Galès, A. et al. Control of the pH for marine microalgae polycultures: A key point for CO2 fixation improvement in intensive cultures. Journal of CO2 Utilization 38, 187–193 (2020).

  ·Kazbar, A. et al. Effect of dissolved oxygen concentration on microalgal culture in photobioreactors. Algal Research 39, 101432 (2019).

  ·Heydarizadeh, P. et al. Carbon Orientation in the Diatom Phaeodactylum tricornutum: The Effects of Carbon Limitation and Photon Flux Density. Front. Plant Sci. 10, (2019).

  ·Harvey, B. P., Agostini, S., Kon, K., Wada, S. & Hall-Spencer, J. M. Diatoms Dominate and Alter Marine Food-Webs When CO2 Rises. Diversity 11, 242 (2019).

  ·Chu, Y., Liu, Y., Li, J. & Gong, Q. Effects of elevated pCO2 and nutrient enrichment on the growth, photosynthesis, and biochemical compositions of the brown alga Saccharina japonica (Laminariaceae, Phaeophyta). PeerJ 7, e8040 (2019).

  ·Walker, C. E. et al. The requirement for calcification differs between ecologically important coccolithophore species. New Phytologist 220, 147–162 (2018).

  · Ben Ouada, S., Ben Ali, R., Leboulanger, C., Ben Ouada, H. & Sayadi, S. Effect of Bisphenol A on the extremophilic microalgal strain Picocystis sp. (Chlorophyta) and its high BPA removal ability. Ecotoxicology and Environmental Safety 158, 1–8 (2018).


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