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SM 9000光谱仪
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北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为国家高新技术企业，总部位于北京中关村翠湖云中心，致力于“生态、农业、健康”科学研究与监测/检测技术方案推广、研发与应用服务，营业范围主要包括：
1) 自然科学研究与实验发展，生态-资源-环境实验研究与监测/检测技术
2) 农业科学研究与实验发展，作物表型组学研究技术、种质资源检测鉴定与保护技术等
3) 医学研究与实验发展，生物医学研究技术、能量代谢测量技术、中医药研究技术等
4) 技术开发、转让、咨询、服务及国际仪器设备营销
易科泰生态技术公司设立有如下研究实验发展机构：
1) EcoTech®实验室（北京），配备有国际实验研究检测技术仪器装备，如叶绿素荧光成像系统、多光谱荧光成像系统、高光谱成像系统、红外热成像仪、动物呼吸代谢测量系统、人体能量代谢测量系统等，可提供作物表型分析与种质资源检测鉴定、生物安全与生物检测、食品检测、中药品质检测鉴定、动物能量代谢测量等实验分析服务与合作研究。
2) 易科泰光谱成像与无人机遥感技术研究中心（西安），致力于光谱成像特别是高光谱成像创新应用研发集成、近地遥感与无人机遥感技术研发集成等。
3) 阿拉善蒙古牛生态牧业研究院，致力于以国家畜禽遗传资源保护物种蒙古牛为旗舰的农业种质资源保护与可持续利用、草原生态保护与可持续利用研究与实验发展。
4） 易科泰生态医学研究所（内蒙阿拉善），致力于民族医学特别是中医、蒙医与生态健康研究实验发展
易科泰生态技术公司与全球几十家国际科研仪器技术公司建立有代理关系或合作关系，如美国Sable公司（动物能量代谢测量研究）、捷克PSI公司（叶绿素荧光技术、植物表型分析技术等）、芬兰Specim公司（高光谱成像技术）、法国YellowScan公司（激光雷达技术）、欧盟CEITEC研究中心（LIBS技术）、英国ADC公司（植物光合作用）等，与国际合作引进推广了大量优异的研究技术和仪器技术，为我国农业、林业、水资源管理、生态环境研究及医学健康等领域科技进步提供了有力的技术支撑。公司还与捷克PSI植物与藻类表型分析研究中心、欧盟CEITEC激光光谱学实验室、美国Sable公司动物能量代谢实验室、西班牙BCN无人机遥感中心建立合作关系，致力于国际技术的推介、学术交流、培训、人才培养（如博士生培养等）、研究合作等。
“工欲善其事，必先利其器”，易科泰生态技术公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态、农业、健康研究与事业发展提供优异技术服务与技术方案。
详细信息
SM9000光谱仪是一种高分辨率光纤光谱测量仪，测量范围涵盖紫外光、可见光乃至近红外波段。SM9000既可以单独使用，也可以与FKM多光谱荧光动态显微成像系统、FL3500双调制叶绿素荧光仪等仪器联用，测量各种荧光的光谱组成。由于其具备超高的灵敏度，甚至可以测量单个细胞激发荧光的光谱。每秒可记录100组16bits分辨率的光谱数据。
功能特点：
·超高灵敏度，可检测单个细胞的荧光光谱
·超高分辨率，可检测10μs - 10ms的闪光
·采集频率达100次/秒，可检测动态光谱
·积分时间从1毫秒到数分钟可调
·模块化设计，小巧耐用，热稳定性高
·产热量极低
技术参数：
·光谱范围：200 - 980nm
·分辨率：可检测10μs - 10ms的闪光
·采集频率：100次/秒
·积分时间：1毫秒到数分钟可调
·光学入口：直径0.5，数值孔径（NA）=0.22，可拆卸SMA接头
·入射狭缝：70µm×1400µm
·光栅：平场型校正
·波长精确度：< 0.5nm
·再现性：< 0.1nm
·温度漂移：< 0.01nm/K
·像素光谱距离：0.8nm
·FWHM半高宽：3 - 4nm
·杂散光：0.1%（氙灯340nm测量）
·CCD阵列像素数：1044×64
·像素尺寸：24×24mm2
·系统数据：16Bit模数转换
·可联用仪器：FKM多光谱荧光动态显微成像系统、FL3500双调制叶绿素荧光仪等
与FKM多光谱荧光动态显微成像系统联用的SM9000
应用案例：
与FKM系统联用研究铜指示植物海州香薷Elsholtzia splendens的叶绿素荧光及其光谱组成（Peng，2013，Environ. Sci. Technol）
与FL3500系统联用研究蓝隐藻Guillardia theta的叶绿素荧光及其光谱组成（Cheregi，2015，Journal of Experimental Botany）
产地：欧洲
参考文献：
1. Bernát G, et al. 2017. On the origin of the slow M–T chlorophyll a luorescence decline in cyanobacteria: interplay of short-term light-responses. Photosynthesis Research, DOI 10.1007/s11120-017-0458-8
2. Selyanin V, et al. 2016. The variability of light-harvesting complexes in aerobic anoxygenic phototrophs. Photosynthesis research, 128(1): 35-43
3. Tilstone G, et al. 2016. Effect of CO2 enrichment on phytoplankton photosynthesis in the North Atlantic sub-tropical gyre. Progress in Oceanography, 158: 76-89
4. Mishra K B, et al. 2016. Plant phenotyping: a perspective. Indian Journal of Plant Physiology, 21(4): 514-527
5. Cheregi O, Kotabová E, Prášil O, et al. 2015. Presence of state transitions in the cryptophyte alga Guillardia theta . Journal of Experimental Botany, 66: 6461-6470
6. Li G, Brown C M, Jeans J A, et al. 2015. The nitrogen costs of photosynthesis in a diatom under current and future pCO2. New Phytologist, 205:533-543
7. Kotabová E, Jarešová J, Kaňa R, et al. 2014. Novel type of red-shifted chlorophyll a antenna complex from Chromera velia. I. Physiological relevance and functional connection to photosystems. Biochimica et Biophysica Acta – Bioenergetics, 1837:734-743
8. Šebela D, Olejníčková J, Sotolář R, et al. 2014. The slow S to M fluorescence rise in cyanobacteria is due to a state 2 to state 1 transition. BBA , 1817: 1237-1247
9. Peng H, et al. 2013. Toxicity and Deficiency of Copper in Elsholtzia splendens Affect Photosynthesis Biophysics, Pigments and Metal Accumulation. Environ. Sci. Technol., 47 (12): 6120-6128
